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一種瓊脂糖酶的固定化方法

文檔序號:9592401閱讀:1199來源:國知局
一種瓊脂糖酶的固定化方法
【技術(shù)領域】
[0001] 本發(fā)明所屬酶工程研究開發(fā)技術(shù)領域。本發(fā)明涉及殼聚糖微球固定化瓊脂糖酶的 方法研究,適合工業(yè)化生產(chǎn)。
【背景技術(shù)】
[0002] 瓊膠是一種重要的海藻多糖,主要由瓊膠糖和硫瓊膠組成。瓊膠酶降解瓊膠糖,根 據(jù)其作用方式不同,可以把瓊膠酶分為兩類:α-瓊膠酶和β-瓊膠酶。α-瓊膠酶裂解瓊 膠糖的α_1,3-糖苷鍵,生成以β-D-半乳糖為非還原性末端和以3,6_內(nèi)醚-α-L-半乳 糖為還原性末端的瓊寡糖列;β-瓊膠酶裂解瓊膠糖的β-1,4-糖苷鍵,生成以β-D-半乳 糖為還原性末端和以3,6-內(nèi)醚-a-L-半乳糖為非還原性末端的新瓊寡糖系列。瓊膠酶降 解過程具有得率高、污染小和產(chǎn)物的安全性高等優(yōu)點,是降解瓊膠糖最有潛力的方法。
[0003] 瓊膠酶降解瓊膠糖生產(chǎn)瓊寡糖產(chǎn)品已廣泛應用于食品業(yè),化妝品業(yè)和醫(yī)藥工業(yè), 例如作為天然的防腐劑、淀粉老化抑制劑、功能性食品基料、抗氧化劑等。同時瓊膠酶在海 藻的單細胞分離、酶解破壁制備原生質(zhì)體等過程具有重要的使用價值,是一種海藻遺傳工 程的工具酶;在分子生物學方面,利用瓊膠酶降解瓊膠糖從瓊膠糖凝膠中回收DNA和RNA, 已經(jīng)被證明是最好的方法之一;瓊膠酶也用于海藻多糖的結(jié)構(gòu)研究,用瓊膠酶水解某些海 藻的多糖,測定其水解產(chǎn)物的結(jié)構(gòu),進而推測多糖的結(jié)構(gòu),是行之有效的方法。
[0004] 但目前該酶的應用研究主要是對游離酶,但游離酶穩(wěn)定性差,保質(zhì)期短,重復利用 率低,往往使應用成本增高而限制了其應用。所以在酶的應用研究中,固定化酶的研究是生 物技術(shù)領域中新興的一門技術(shù)。
[0005] 酶的固定化是指用載體材料將酶限制于一定空間內(nèi)進行催化反應,固定化酶可回 收及反復連續(xù)利用的一類技術(shù)。固定化酶保留了游離酶高效專一、溫和的催化性質(zhì),同時又 克服了游離酶的缺點,具有高穩(wěn)定性、易分離純化、回收使用、操作簡便等優(yōu)點。然而,廣泛 投入工業(yè)化應用的固定化酶卻不多。因此,進一步開發(fā)更經(jīng)濟適用的固定化方法,使更多的 酶取得工業(yè)上的廣泛應用,仍是科技工作者追求的目標。
[0006] 酶的固定化方法常用的是:吸附法、交聯(lián)法、共價結(jié)合和法包埋法。在此基礎上還 出現(xiàn)了上述方法的結(jié)合法等
[0007] 酶固定化研究中,良好的載體是固定化酶成功的關(guān)鍵。所以在酶固定化領域,作為 固定化載體的篩選和制備就成為了主要研究方向。
[0008] 甲殼素是由乙酰胺基葡萄糖以β_1,4鏈連接而成的天然線性高聚物,是自然界 中僅次于纖維素的第二可再生資源。殼聚糖是甲殼素經(jīng)脫乙?;磻玫降漠a(chǎn)物,分子結(jié) 構(gòu)中含有豐富的游離氨基。選擇殼聚糖作為固定化載體是基于它來源豐富,具親水性,生物 相容性以及抗微生物分解特性等。殼聚糖氨基與戊二醛基形成schiff堿,在膠囊表面形成 一層致密的保護膜,可增加微膠囊球的強度,這就是吸附-交聯(lián)法固定化酶。
[0009] 由于目前瓊脂糖酶的固定化國內(nèi)外還沒人研究,所以利用廉價的殼聚糖作為固定 化載體固定瓊脂糖酶具有較大的理論和實踐意義。而本方法研究的目的是開發(fā)殼聚糖的應 用領域,并可以增強瓊脂糖酶在工業(yè)、醫(yī)學、食品、環(huán)境保護等領域的應用。

【發(fā)明內(nèi)容】

[0010] 1.本發(fā)明涉及用殼聚糖固定化瓊脂糖酶的方法,其特征在殼聚糖固定化瓊脂糖酶 的方法,包括以下過程:
[0011] 步驟(一):用1.5-2% (V/V)乙酸配制1 : 20 (W/V)的殼聚糖溶液,充分溶解;
[0012] 步驟(二):將步驟(一)的殼聚糖溶液逐滴滴入lmol/L氫氧化鈉溶液中,殼聚 糖將凝聚成白色顆粒,過濾收集殼聚糖珠;
[0013] 步驟(三):將步驟(二)的殼聚糖珠用蒸餾水洗滌至中性;
[0014] 步驟(四):將步驟(三)的殼聚糖珠用0· 2m〇l/L、pH7. 6的磷酸緩沖溶液浸泡過 夜;
[0015] 步驟(五):取步驟(四)中的殼聚糖珠載體2.5-5g,加入2.5 %的戊二醛 20-25ml,水浴振蕩0. 5小時,室溫交聯(lián)5-6小時,磷酸緩沖液沖洗殼聚糖珠交聯(lián)載體;
[0016] 步驟(六):在步驟(五)中的殼聚糖珠交聯(lián)載體中加入10_15mL稀釋的瓊脂糖 酶液,攪拌均勻,4°C固定2-3小時,用磷酸緩沖液沖洗;
[0017] 步驟(七):將步驟(六)中的固定化酶抽真空得到固定化瓊脂糖酶。
[0018] 2.根據(jù)本發(fā)明所述的制備固定化瓊脂糖酶的載體是殼聚糖微球。
【附圖說明】
[0019] 圖1是pH值對酶活性的影響圖,圖2是溫度對酶活性的影響圖,圖3是游離酶和 固定化酶的熱穩(wěn)定性圖。
【具體實施方式】
[0020] 本發(fā)明所述的涉及殼聚糖微球固定化瓊脂糖酶方法包括以下實施例,下面的實施 例可進一步說明本發(fā)明,但不以任何方式限制本發(fā)明。
[0021] 實施例1 :pH值對酶活性的影響
[0022] 平行取制備好的殼聚糖固定化酶0. 5g和相應的游離酶,在不同pH(4. 0-9. 0)條件 下分別加底物與游離酶及固定化酶作用,分別測定其酶活力,結(jié)果如圖1所示。
[0023] 圖1表明,游離酶的最適pH值為8. 0,隨著pH值的升高酶活性下降;對固定化酶而 言,在本實驗條件下,當pH值達到8. 5的時候酶活性達到最大值,固定化使酶的最適pH往 堿性方面升高0. 5個單位,符合酶和載體結(jié)合后的基本規(guī)律。
[0024] 實施例2 :溫度對酶活性的影響
[0025] 平行取制備好的殼聚糖固定化酶0. 5g和相應的游離酶,在不同溫度(30°C_80°C) 條件下分別加底物與游離酶及固定化酶作用,分別測定其酶活力,結(jié)果如圖2所示。
[0026] 由圖2可知,游離瓊脂酶在40°C下表現(xiàn)出最高活力,隨溫度升高,活力急劇下降, 酶開始失活,但對固定化酶而言,在40_60°C范圍內(nèi)均有較大酶活,50°C時酶活力達最大值, 固定化酶耐熱性顯著提高。
[0027] 實施例3 :游離酶和固定化酶的熱穩(wěn)定性
[0028] 平行取制備好的殼聚糖固定化酶0. 5g和相應的游離酶,在不同溫度(20°C_80°C) 條件下保溫0. 5h,然后加底物與其作用,分別測定其酶活力,結(jié)果如圖3所示。
[0029] 由圖3可知,酶液在40 °C以下短暫保溫對酶活影響較小,溫度進一步提升至50°C 時對游離酶活性影響增加,損失約為27. 36%,而對固定化酶活力影響仍較小。在60°C時, 游離酶的活性很低,而固定化酶活約為50%,70°C時酶基本都已完全沒有活性,說明固定化 酶的熱穩(wěn)定性高于游離酶。
[0030] 實施例4 :固定化酶的操作穩(wěn)定性
[0031] 取固定化酶0. 5g,加0. 5%瓊脂糖底物1. 5ml與之反應,連續(xù)操作6次,分別測定 6次反應后的酶活力大小,結(jié)果如表1。
[0032] 表1固定化瓊脂酶的操作穩(wěn)定性
[0033]
[0034] 酶的穩(wěn)定性可以從反應的產(chǎn)物(還原糖)收率來衡量。而產(chǎn)物的收率可以間接的 從酶活力的大小來判斷。因此,從表1可以看出,在使用第1次的時候固定化酶有較高的活 力,說明還原糖的量較高,也就是說產(chǎn)物的收率較高;第2次以后固定化酶活力略有減少, 隨著使用次數(shù)的增加,酶活力雖然逐漸減小,但使用6次后酶活力仍有83.8左右。說明固 定化瓊脂酶具有固定化酶的顯著特點,即可重復利用性。
[0035] 實施例5 :固定化瓊脂酶對瓊脂糖的轉(zhuǎn)化及轉(zhuǎn)化率
[0036] 準確稱取取固定化瓊脂酶0. 5g,加0. 5%瓊脂糖底物1. 5ml與之反應,加入2ml緩 沖液,在50°C下酶解lh,測其轉(zhuǎn)化率,其平均轉(zhuǎn)化率可達92. 6 %。
[0037] 實施例6 :固定化瓊脂糖酶的穩(wěn)定性
[0038] 在最佳條件下所得固定化酶,其活力回收為77. 6%,在室溫下貯存4個月,測得活 力回收72.8% .可見,固定化瓊脂糖酶的穩(wěn)定性優(yōu)良。
【主權(quán)項】
1. 瓊脂糖酶固定化的方法,其特征在于用殼聚糖微球固定化瓊脂糖酶。包括以下過 程: 步驟(一):用1.5-2% (V/V)乙酸配制1 : 20(W/V)的殼聚糖溶液,充分溶解; 步驟(二):將步驟(一)的殼聚糖溶液逐滴滴入lmol/L氫氧化鈉溶液中,殼聚糖將 凝聚成白色顆粒,過濾收集殼聚糖珠; 步驟(三):將步驟(二)的殼聚糖珠用蒸餾水洗滌至中性; 步驟(四):將步驟(三)的殼聚糖珠用〇· 2mol/L、ρΗ7·6的磷酸緩沖溶液浸泡過夜; 步驟(五):取步驟(四)中的殼聚糖珠載體2. 5-5g,加入2. 5%的戊二醛20-251111,水 浴振蕩〇.5小時,室溫交聯(lián)5-6小時,磷酸緩沖液沖洗殼聚糖珠交聯(lián)載體; 步驟(六):在步驟(五)中的殼聚糖珠交聯(lián)載體中加入10_15mL稀釋的瓊脂糖酶液, 攪拌均勻,4°C固定2-3小時,用磷酸緩沖液沖洗; 步驟(七):將步驟(六)中的固定化酶抽真空得到固定化瓊脂糖酶。2. 根據(jù)本發(fā)明所述的制備固定化瓊脂糖酶的載體是殼聚糖。
【專利摘要】本發(fā)明所屬酶工程研究開發(fā)技術(shù)領域。本發(fā)明涉及一種瓊脂糖酶的固定化方法研究。用1.5-2%(V/V)乙酸配制1:20(W/V)的殼聚糖溶液,充分溶解;溶解后的殼聚糖溶液逐滴滴入1mol/L氫氧化鈉溶液中,過濾收集殼聚糖珠;用蒸餾水洗滌至中性,再用0.2mo1/L、pH7.6的磷酸緩沖溶液浸泡過夜;取浸泡的殼聚糖珠載體2.5-5g,加入2.5%的戊二醛20-25ml,水浴振蕩0.5小時,室溫交聯(lián)5-6小時,磷酸緩沖液沖洗殼聚糖珠交聯(lián)載體;在殼聚糖珠交聯(lián)載體中加入10-15mL稀釋的瓊脂糖酶液,攪拌均勻,4℃固定2-3小時,用磷酸緩沖液沖洗;抽真空得到固定化瓊脂糖酶。本發(fā)明制備固定化酶的方法,載體廉價易得,工藝簡單,條件溫和,對酶活性損失小,酶活回收率可達到77.6%。
【IPC分類】C12N11/04, C12N11/10
【公開號】CN105349518
【申請?zhí)枴緾N201510251158
【發(fā)明人】李曉梅
【申請人】菏澤家政職業(yè)學院
【公開日】2016年2月24日
【申請日】2015年5月14日
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